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                       Inserito il - 04 marzo 2011 :  09:25:33
                        
                        
                 
                        
                      
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                       Ciao a tutti...Volevo chiedere un parere a chi sicuramente ha più esperienza di me nelle trasformazioni batteriche. Ho effettuato la trasformazione di cellule DH5alpha con 3 diversi prodotti di ligazione e ho fatto anche i rispettivi controlli in cui ho aggiunto soltanto il vettore tagliato con due enzimi di restrizione diversi (teoricamente non dovrebbe richiudersi). Il risultato ottenuto è che, nella coppia ligazione1-CNTRL1 non vedo colonie nelle due piastre; nella coppia ligazione2-CNTRL2 vedo le colonie solo nel CNTRL, mentre nella coppia ligazione3-CNTRL2 vedo sostanzialmente lo stesso numero di colonie in entrambe le piastre. Tempo fa ho trasformato solo i vettori in queste cellule e la trasformazione è venuta molto bene al primo tentativo. Questo mi fa ipotizzare che le DH5alpha sono ok e che il problema sia nella ligazione. Ho messo a ligare 40 ng di vettore con gli inserti in rapporto 1:3 molare (come da protocollo della ligasi usb) e, l'unica cosa che non ho la possibilità di controllare è l'efficienza di restrizione dei prodotti di pcr purificati. Un esperto mi ha detto che in presenza di clumps GCGC (il mio prodotto di PCR sarà = GCGC-RS1-sequenza-RS2-GCGC)gli enzimi dovrebbero digerire molto bene, mentre io sapevo che non è così, e che bisogna prima clonare in un vettore con le T protruding (tipo T-Vector) che permetta il clonaggio dei prodotti di pcr, e poi tagliare con gli enzimi desiderati (solo così si è sicuri della specifica restrizione). Qualcuno può confermare o smentire questa informazione?
  Grazie a tutti per gli eventuali suggerimenti. 
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